肝癌干细胞中差异表达miRNAs对肝癌干细胞增殖和

摘　要：目的：探讨肝癌干细胞较卵园细胞中高表达的miRNAs（hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122）对肝癌干细胞增殖和转移的影响。方法：分离培养肝癌干细胞，构建并转染肝癌干细胞中差异表达的miRNAs寡核苷酸，通过MTT实验、裸鼠成瘤实验、裸鼠脾脏转移实验观察干扰hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122的表达后肝癌干细胞增殖和转移能力。结果：采用寡核苷酸干扰hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122的表达后，肝癌干细胞增殖能力较对照组显著减弱，裸鼠成瘤实验中形成的肿瘤显著小于对照组，脾脏肿块及肝转移肿瘤显著小于对照组。结论：hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122能够增强肝癌干细胞增殖，促进其成瘤及转移。

关键词： miRNA；肝癌干细胞；增殖；转移
　　对miRNAs的研究正如火如荼般地进行着，人们发现很多miRNA是肿瘤发生、形成及转移的重要调节因子，抑制肿瘤形成的miRNA通常以低水平状态表达，而促进肿瘤生长及转移的miRNA则在肿瘤及肿瘤细胞中呈高水平表达。很多文献报道miRNA与肿瘤细胞的增殖和转移有关，而肝癌干细胞具有强大的增殖能力，在肝癌发生发展中可能起重要的作用[1-11]。若能成功地把miRNAs和肿瘤干细胞整合起来进行研究将是探讨肿瘤早期诊断、预防与治疗的新思路。实验室课题组人员之前采用miRNA芯片比较了肝癌干细胞与卵园细胞中差异表达的miRNA，并选择其中部分表达差异较大的miRNA进行Northern杂交验证，发现hsa-miR-199a-3p和hsa-miR-122在肝癌干细胞中的表达要明显高于卵园细胞。在文章中，通过寡核苷酸干扰肝癌干细胞中hsa-miR-199a-3p和hsa-miR-122的表达，随后通过MTT观察肝癌干细胞的增殖能力，并通过裸鼠成瘤能力及脾脏转移能力等实验观察肝癌干细胞的成瘤及转移能力。
1 资料与方法
1.1  一般资料：实验动物和试剂：本实验中所用裸小鼠为4～6周雄性裸小鼠（BALB/c-nu/nu），体重15～20 g，由南方医科大学动物实验中心提供，饲养于清洁级饲养室，提供正常光照及自由摄食条件。MEM培养基购自Hyclone，胰酶购自Sigma，胎牛血清购自杭州四季青公司，寡核苷酸由三博远志公司提供，转染试剂lipo2000、MTT试剂盒购自Promega。
1.2  实验方法和步骤
1.2.1 肝癌手术标本选取：取3例肝癌患者手术后标本进行实验。
1.2.2 肝癌干细胞样细胞培养，分离与鉴定：取处于对数生长期的肝癌细胞，有限稀释法单克隆分离、培养肝癌干细胞；裸鼠成瘤实验验证其成瘤能力后，观察高成瘤能力，有分化能力的肿瘤细胞即为肝癌干细胞样细胞。
1.2.3 肝癌干细胞转染microRNA反义寡核苷酸：分别取对数生长期的肝癌干细胞，调整细胞的浓度为7.5×105/ml。在48孔板中，每孔加入细胞悬液200 μl，细胞数为15 000个/ml，设3个空白对照孔，置37℃ 5% CO2孵箱培养。利用肝癌干细胞及卵园细胞miRNA表达不同的miRNA，设计待测的microRNA的反义寡核昔酸（DNA）和反义2'-0一甲基RNA，将脂质体与反义寡核苷酸加入到相应量的无血清培基中进行稀释，稀释后的脂质体分别加入到反义寡核苷酸作用15 min备用。取出48孔培养板，洗涤后每孔各加入100 μl上述混合液，（细胞对照孔只加100 μl无血清培基），设3个复孔，37℃，5% CO2孵箱，4 h后每孔补加1640培养液大鼠100 μl，在培养24 h后取出培养板换液继续培养。
1.2.4 MTT法测量特征microRNA功能：在培养72 h后取出培养板（包括转染miRNA反义寡核苷酸细胞与对照组细胞），每孔加MTT40 μl（5 mg/ml），继续培养4 h。取出培养板，离心5 min，每孔加200 μl DMSO终止反应并溶解甲基蓝紫色颗粒，震荡混匀，酶标仪测波长为570 nm的各孔吸光度值（OD570）。
1.2.5 裸鼠成瘤能力的观察：转染miRNA反义寡核苷酸细胞与对照组细胞继续培养，调整细胞密度为5×107/ml，取0.2 ml细胞悬液注射到裸鼠左侧腋背部皮下，观察裸鼠移植肿瘤生长情况，1个月裸鼠移植肿瘤测重。
1.2.6 裸鼠脾脏转移潜能的观察：转染 miRNA反义寡核苷酸细胞与对照组细胞继续培养，调整细胞密度为3×106/ml。裸鼠麻醉后固定于实验架上，无菌条件下行左肋下0.5 cm处暴露脾脏。取0.3 ml，细胞悬液缓慢注入脾脏被膜下1/3处。注射完毕后，用质量分数75%乙醇压迫止血并杀死外渗的癌细胞。脾脏回纳入腹腔。SPF条件下饲养于层流架中，处于屏障补充环境，灭菌处理水和饲料供动物自由摄入，定时观察动物的生长状况。实验动物6周后处死、解剖，取肝脏、脾脏、肺脏作常规病理切片观察。分别计算两种细胞脾脏成瘤率及肝转移率。
1.3  统计学分析：各分组所得计量数据以均数±标准差（）表示，用SPSS 10.0软件处理数据，两组间均数比较用t检验。检验水准α=0.05，以P＜0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1  培养细胞生长观察：之前的研究显示，hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA在肝癌干细胞中呈高表达。在反义寡核苷酸处理肝癌干细胞后，采用MTT实验观察肝癌干细胞生长情况是否会受到sa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA的调控。发现与对照组相比，hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA反义寡核苷酸的处理均能使肝癌干细胞的生长受到抑制，见图1。






图1  MTT实验观察体外肝癌干细胞生长情况
　　与对照组相比，hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA寡核苷酸转染肝癌干细胞后，肝癌干细胞的增殖能力明显减弱，差异有统计学意义（P＜0.05）。
2.2  裸鼠成瘤能力：转染miRNA反义寡核苷酸的肝癌干细胞与对照组细胞继续培养后接种至小鼠左侧腋背部皮下，观察干扰hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA后，肝癌干细胞的成瘤能力。接种反义寡核苷酸组的小鼠4周后肉眼及手触诊均未见皮下明显肿块；对照组的小鼠在3周时肉眼及手触诊均可见接种位置米粒大小的肿块，在4周时肿瘤突起明显，对侧未见明显肿块，解剖确认接种反义寡核苷酸的小鼠腋窝皮下肿瘤数量及大小明显小于对照组小鼠。说明干扰肝癌干细胞中hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA的表达后，肝癌干细胞的成瘤能力明显减弱，见图2。
　　
　　
　　
　　
　　
图2  裸鼠成瘤实验观察体内肝癌干细胞成瘤情况
　　与对照组相比，hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA寡核苷酸转染肝癌干细胞后，肝癌干细胞的成瘤数量明显降低，致瘤性明显减弱，差异有统计学意义（P＜0.01）。
2.3  裸鼠脾脏转移潜能：随后观察干扰肝癌干细胞中高表达的hsa-miR-199a-3p，hsa -miR-122 miRNA后肝癌干细胞的转移能力。转染miRNA反义寡核苷酸的肝癌干细胞与对照组细胞分别接种至小鼠脾下，6周后处理小鼠，解剖确认各组小鼠肿瘤数量及大小，分别计算两种细胞脾脏成瘤率及肝转移率。接种转染miRNA反义寡核苷酸的肝癌干细胞的小鼠脾脏转移潜能明显弱于对照组。实验组较对照组裸鼠肝脏转移灶数目明显减少、脾脏上种植瘤形成明显减少，见图3。
　　




图3  裸鼠脾脏转移实验观察体内肝癌干细胞成瘤情况
　　与对照组相比，hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA寡核苷酸转染肝癌干细胞后，肝癌干细胞接种脾脏所引起的脾脏肿瘤数（左）及肝肿块数（右）明显降低，说明肝癌干细胞的转移能力明显减弱，差异有统计学意义（P＜0.05）。
3 讨论
　　研究发现hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122miRNA在肝癌干细胞中呈较高水平的表达，采用寡核苷酸下调其表达能够抑制肝癌干细胞的增殖、体内成瘤能力及转移能力，提示hsa-miR-199a-3p，hsa-miR-122 miRNA在肝癌干细胞的增殖、致瘤性、转移等方面具有重要作用。
　　MTT实验是检测细胞活力的实验方法，由于细胞活力与细胞数呈正相关，因此也常常用来检测细胞的增殖情况。细胞数越多，MTT的值会越大。在本实验中，寡核苷酸的处理显著地减少了肝癌干细胞的细胞增殖。
　　肿瘤干细胞的致瘤性主要分两个方面进行评价：①体外克隆形成能力，即在软琼脂上肿瘤干细胞形成克隆数及其大小；②在免疫缺陷动物如裸鼠体内的肿瘤形成能力。本研究采用第二种方法即体内实验，较体外实验相比，在体水平上的结果具有更强的说服力。
　　笔者通过进一步对肝癌干细胞特异miRNAs功能的鉴定，有助于进一步阐明其对肝癌干细胞的调控机制，也能促进对肿瘤发生发展更深入的理解，也可为临床治疗及药物研发提供理论依据及思路。
4 参考文献
[1] Chan E,D.E. Prado,J.B. microRNAs:From subtype profiling to predictors of response to therapy[J].Trends Mol Med,2009,22(1):22.
[2] Feng -107 targets cyclin-dependent kinase 6 expression,induces cell cycle G1 arrest and inhibits invasion in gastric cancer cells[J].Med Oncol,2001,21(1):98.
[3] Kluiver tion of pri-microRNA BIC transcription and processing in Burkitt lymphoma[J].Oncogene,2007,26(26):3769.
[4] Skalsky 's sarcoma-associated herpesvirus encodes an ortholog of miR-155[J].J Virol,2007,81(23):12836.
[5] Xia -125b expression affects the proliferation and apoptosis of human glioma cells by targeting Bmf[J].Cell Physiol Biochem,2009,23(4):347.
[6] Catto NA in Prostate,Bladder,and Kidney Cancer:A Systematic Review[J].Eur Urol,2003,19(1):33.
[7] Bray NA-542-5p as a novel tumor suppressor in neuroblastoma[J].Cancer Lett,2005,30(1):56.
[8] Ikegami orming growth factor-beta signaling and liver cancer stem cell[J].Hepatol Res,2009,39(9):847.
[9] Shao s of mesenchymal stem cell transplantation on growth of liver cancer:experiment with rats[J].Zhonghua Yi Xue Za Zhi,2009,89(7):491.
[10] Soderdahl transplantation followed by adjuvant nonmyeloablative hemopoietic stem cell transplantation for advanced primary liver cancer in humans[J].Transplantation,2003,75(7):1061.
[11] Faris, liver cancer a stem cell-derived disease[J].Hepatology,1994,20(5):1368. 本文链接：http://www.qk112.com/lwfw/yxlw/linchuangyixue/95638.html